Die Kursformalitäten (Kursplan, Arbeitsprotokolle) und die Vorlesungsunterlagen ( Flow Cytometry - Basics, Cell Proliferation - Cell Cycle, Scales Means Thresholds, Immunology - Analysis and Applications, Fluorochromes - Basics and Applications, Cell Activation - Fluorescent Reporters, Cell Kinetics - BrdU Labeling Techniques, Cell Death - Apoptosis, Flow cytometric applications: biotechnology and environment) stehen für die Kursteilnehmer auf der Seite "Download Vorlesungen" zur Verfügung. Hinzu kommen ergänzte Unterlagen auf der Seite "Download Übungsfiles" (Datenfiles zur Computersimulation z. B. mit dem Flowing oder WinMDI Programm).

 

Theoretische Grundlagen - Vorlesung

 

Tag 1

Flowzytometrie Grundlagen, Technikkomponenten, Gerätevarianten (z..B. mass cytometry, spectral cytometry).

DNA-Messung, Zellzyklus, zellzykluskorrelierte Genexpression, Genomgröße.

Tutorial: Zellzyklus Analyse Fallbeispiele (u.a. +/-RNAse, DNA-Standards, Multipeakanalyse, Vitalzellzyklus, Scatter Zellaggregat Diskriminierung).

 

Tag 2

Immunologie, Antikörper, Immunfluoreszenz, Mehrfarbenkompensation, Rezeptoranalysen Membran und intrazellulär.

Skaleneinteilung (lin, log, bi-exponential), Mittelwerte, Problematik Schwellwerte.

 

Tag 3

Tutorial: Immunostaining Analyse Fallbeispiele (u.a. PBL Scatter/PI lebend tot, Vollblutlyse und Ficoll 2/3 Parameteranalysen, T/NK/B/Mono/Granulo Zellen, Thrombozyten, Transferrin Agonistenbindung und kompetitive Blockierung, Maus Knochenmarkanalyse).

Zellaktivierung (Ionenströme, neue Reportermolekültechniken ,enzymatisch/autofluoreszente Proteine, immunologische Zelloberflächenreporter, bidirektionelle Plasmide).

Tutorial: Zellaktivierung Analyse Fallbeispiele (u.a. Ca2+ Flux Jurkat/Mono/Granulo/Thrombo, GFP Transfektionsanalyse, bidirektionelle Plasmid Genexpressionsanalyse und Reportermolekül Gating).

 

Tag 4

Fluorochrome: Grundlagen und Anwendungen.

Zelltod Apoptose/Nekrose (u.a. biologische Grundlagen, zellanalytische Nachweisverfahren).

Tutorial: Zelltod Analyse Fallbeispiele (u.a. Jurkat Apoptose mit Camptothecin und anti-FAS, TUNEL Analyse von Xenograft Tumoren).

Kinetische Zellproliferationsanalysen, BrdU-Techniken (u.a. Quenching, Anti-BrdU), Proliferationsmarker.